6. Подготовка к отбору проб
6.1. Места сбора материала
Оценка проводится на модельных площадках, которые выбираются в зависимости от целей работы:
· Для фонового мониторинга используются несколько площадок в разных биотопах, различных по естественным условиям.
· Для оценки последствий антропогенного воздействия площадки выбираются из максимально сходных по естественным условиям биотопов с разной степенью антропогенной нагрузки, а также из мест не подверженных антропогенной нагрузке для оценки условного фонового уровня.
6.2. Выбор объекта
Оценка качества среды предполагает анализ наиболее обычных фоновых видов (модельных объектов) разных групп животных и растений.
Для характеристики состояния экосистемы рекомендуются следующие критерии отбора модельных объектов:
· выбор представителей различных систематических групп, занимающих разное место в экосистемах;
· выбор видов, обычные миграции которых не выходят за пределы исследуемых территорий;
· выбор относительно крупных организмов, которые в меньшей степени зависят от микробиотопических условий в пределах исследуемых местообитаний, и пригодны для характеристики исследуемой территории в целом;
· выбор фоновых видов для общей характеристики местообитания и возможности сбора необходимого материала на всех исследуемых участках в течение ограниченного промежутка времени;
· выбор объектов для экстраполяции получаемых данных на человека.
В соответствии с этими критериями для оценки состояния наземных экосистем чаще всего используются следующие виды:
· древесные растения - береза повислая, а также другие виды берез, произрастающие на территории России;
· массовые виды мелких млекопитающих в большинстве местообитаний представлены рыжей полевкой или малой мышью, в условиях с большой антропогенной нагрузкой – полевой мышью.
Для характеристики водных экосистем:
· наиболее обычные, массовые виды рыб – плотва, окунь, лещ;
· земноводных - прудовая или озерная лягушка.
Минимальное необходимое и достаточное количество объектов для проведения оценки качества среды – по одному виду от каждой исследуемой группы наземных и водных организмов (растений, млекопитающих и т. д.).
Для этих объектов были разработаны шкалы балльных оценок состояния организма по уровню стабильности развития. Ниже дан список видов и приведено описание признаков, рекомендуемых для проведения такой оценки.
6.2.1. Растения
· Береза повислая - Betula pendula Roth.
и другие виды берез, произрастающие на территории России.
Для определения видов рекомендуется использовать:
Губанов И.А., Киселева К.В., Новиков В.С., Тихомиров В.Н. Определитель сосудистых растений центра европейской России. 2-е изд. дополн. и перер. М.: Аргус, 1995, 560 с.
6.2.2. Рыбы
· лещ - Abramis brama Linne, 1758
· плотва - Rutilus rutilus Linne, 1758
· речной окунь - Perca fluviatilis Linne, 1758
· щука - Esox luceus Linne, 1758
· карась золотой - Carassius carassius Linne,1758
· серебряный карась - Carassius auratus Bloch,1783
· бычок зеленчак - Zosterisessor ophiocephalus Pallas, (= Gobius ophiocephalus), 1811
Для определения видов рекомендуется использовать:
Берг Л.С. Рыбы пресных вод СССР и сопредельных стран. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1948,1949. Ч.1-3.
6.2.3. Земноводные
· Озерная лягушка - Rana ridibunda Pallas, 1771
· Прудовая лягушка – Rana lessonae Camerano, 1882
· Гибридная форма - Rana esculenta Linne, 1758
· Травяная лягушка – Rana temporaria Linne, 1758
Для определения видов рекомендуется использовать:
Банников А.Г., Даревский И.С., Ищенко В.Г., Рустамов А.К., Щербак Н.Н. Определитель земноводных и пресмыкающихся фауны СССР. М.: Просвещение, 1977. 414с.
6.2.4. Млекопитающие
· рыжая полевка - Clethrionomys glareolus Schreber, 1780
· красная полевка - Clethrionomys rutilus Pallas, 1779
· домовая мышь - Mus musculus Linne, 1758
· полевая мышь - Apodemus agrarius Pallas, 1771
· серая полевка - Microtus arvalis Pallas, 1778
· желтогорлая мышь Apodemus flavicollis (= Sylvaemus flavicollis Melchior, 1834)
· западно-европейская мышь - Apodemus sylvaticus, (= Sylvaemus sylvaticus Linne, 1758)
· малая мышь - Apodemus uralensis (= Sylvaemus uralensis Pallas, 1811)
· мышь малютка (Micromys minutus Pallas, 1771)
· малая белозубка - Crocidura suaveolens Pallas, 1811
· средняя бурозубка - Sorex caecutiens Laxmann,1978
· тундряная бурозубка - Sorex tundrensis Merriam, 1902
· обыкновенная бурозубка - Sorex araneus Linne, 1758
· бурая бурозубка - Sorex roboratus Hollister, 1913
· равнозубая бурозубка - Sorex isodon Turov, 1924
Для определения видов рекомендуется использовать:
Павлинов И.Я., Россолимо О.Л. Систематика млекопитающих СССР. М.: Изд. МГУ, 1987. 287с.
7. Отбор проб полевого материала и подготовка к выполнению исследований
7.1. Растения
Сроки сбора материала. Сбор материала следует проводить после остановки роста листьев (в средней полосе начиная с июля).
Объем выборки. Каждая выборка должна включать в себя 100 листьев (по 10 листьев с 10 растений). Листья с одного растения хранятся отдельно, для того, чтобы в дальнейшем можно было проанализировать полученные результаты индивидуально для каждой особи (собранные с одного дерева листья связывают за черешки). Все листья, собранные для одной выборки, необходимо сложить в полиэтиленовый пакет, туда же вложить этикетку. В этикетке указать номер выборки, место сбора (делая максимально подробную привязку к местности), дату сбора.
Выбор деревьев. При выборе деревьев важно учитывать, во-первых, четкость определения принадлежности растения к исследуемому виду. По данным некоторых авторов береза повислая способна скрещиваться с другими видами берез, образуя межвидовые гибриды, которые обладают признаками обоих видов. Во избежание ошибок следует выбирать деревья с четко выраженными признаками березы повислой. Во-вторых, листья должны быть собраны с растений, находящихся в сходных экологических условиях (учитывается уровень освещенности, увлажнения и т.д.). Рекомендуется выбирать деревья, растущие на открытых участках (полянах, опушках), т.к. условия затенения являются стрессовыми для березы и существенно снижают стабильность развития растений. В-третьих, при сборе материала должно быть учтено возрастное состояние деревьев. Для исследования выбирают деревья, достигшие генеративного возрастного состояния
Сбор листьев с растения. Сбор материала следует проводить после остановки роста листьев (в средней полосе начиная с июля). У березы повислой собирают листья из нижней части кроны дерева с максимального количества доступных веток равномерно вокруг дерева. Тип побега также не должен изменяться в серии сравниваемых выборок. Листья следует собирать только с укороченных побегов. Размер листьев должен быть сходным, средним для данного растения. Поврежденные листья могут быть использованы для анализа, если не затронуты участки, с которых будут сниматься измерения. С растения собирают несколько больше листьев, чем требуется, на тот случай, если часть листьев из-за повреждений не сможет быть использована для анализа.
Подготовка и хранение материала. Для непродолжительного хранения собранный материал можно хранить в полиэтиленовом пакете на нижней полке холодильника. Для длительного хранения надо зафиксировать материал в 60% растворе этилового спирта или гербаризировать.
Сбор материала. Выборки должны состоять из особей сходного возраста. При изучении взрослых рыб необходимо учитывать, что полученные оценки уровня флуктуирующей асимметрии отражают воздействие среды на момент формирования исследованных признаков. Оценку ситуации на текущий момент позволит получить анализ выборок сеголеток. Рекомендуемый объем выборки - 20 особей.
Подготовка и хранение материала. Для анализа лучше всего использовать свежепойманную рыбу. Хранить материал удобно в замороженном виде. Можно фиксировать рыбу в 4% формалине или 70% этаноле. Следует избегать длительного хранения материала, так как при этом возможно нарушение чешуйчатого покрова и некоторых других структур.
7.3. Земноводные
Сбор материала. Для анализа следует брать особей в возрасте от одного года и старше, так как большинство используемых морфологических признаков формируются к этому возрасту и не подвержены дальнейшим возрастным изменениям. Использование сеголеток может быть рекомендовано лишь для сравнения с той же возрастной группой, поскольку к этому моменту не все из исследуемых морфологических структур достигли дефинитивного состояния. Сравниваемые выборки необходимо подбирать из животных сходного размера. Рекомендуемый объем выборки - 20 особей.
Подготовка и хранение материала. Отловленных особей рекомендуется усыплять эфиром. Удобнее всего для анализа использовать свежепойманный материал. При необходимости его можно хранить в замороженном виде, в 4% формалине или 70% этаноле. Хранение в этаноле предпочтительнее, так как при длительном хранении в формалине, окраска лягушек темнеет, что в дальнейшем делает анализ окраски невозможным. Правильно фиксированный материал сохраняет окраску и признаки остеологии на протяжении десятков лет.
7.4. Млекопитающие
Сбор материала. При оценке ситуации на текущий момент, необходимы выборки молодых особей этого года рождения, в других случаях для анализа пригодны особи разного возраста. Рекомендуемая выборка - 20 особей. При сборе материала предпочтительнее использование живоловок или ловчих канавок, т.к. другие орудия отлова могут повреждать материал, что особенно нежелательно при малой численности животных. При интерпретации результатов необходимо учитывать, что полученные оценки стабильности развития по краниологическим признакам отражают воздействие на момент формирования исследованных признаков (период пренатального онтогенеза и ранние этапы постнатального развития) и не подвержены дальнейшим возрастным изменениям.